麦绮莹[1]（2020）在《黑豆皮花青素在细胞培养中的稳定性及对其吸收转运和抗氧化活性的影响研究》文中研究表明花青素是一类广泛存在于植物中的水溶性天然色素,具有抗氧化、抗炎、保护肝脏、预防心血管疾病等多种功效。花青素不稳定,容易受到环境温度、pH等因素的影响。花青素的生物利用度较低,一方面与化合物自身的结构和稳定性有关,另一方面则与机体防御和吸收机制有关。可食用豆类中黑豆的酚类化合物含量和抗氧化活性最高,其中花青素含量最丰富。本研究主要以黑豆皮花青素矢车菊素-3-葡萄糖苷为研究对象,探讨其在三种不同细胞培养条件下的稳定性,探究其与胎牛血清的相互作用机制及对其吸收和抗氧化活性的影响;研究矢车菊素-3-葡萄糖苷在LO2细胞中吸收转运情况。本研究通过研究黑豆皮花青素矢车菊素-3-葡萄糖苷在体外细胞实验条件下的稳定性特征,旨在为基于体外细胞实验的花青素浓度、处理时间、培养基选择等提供科学的依据。主要研究结果如下:（1）黑豆皮中花青素的含量为1.086 mg/g DW,采用液质联用法结合飞行时间质谱定性分析黑豆皮中花青素组成如下:黑豆皮中花青素主要成分为矢车菊素和飞燕草素的糖苷衍生物,具体包括:矢车菊素-3,5-葡萄糖苷、飞燕草素-3-葡萄糖苷、矢车菊素-3-葡萄糖苷、矮牵牛花素-3-半乳糖苷、天竺葵素-3-葡萄糖苷、芍药色素-3-葡萄糖苷、矢车菊素-3-阿拉伯糖苷、锦葵色素-3-阿拉伯糖苷、矢车菊素-3-（6”-丙二酰葡萄糖苷）、芹菜素-3-葡萄糖苷、飞燕草素-3-芸香糖苷、矢车菊素-3-龙胆苷、飞燕草素-己糖苷、飞燕草素-己糖苷、芹菜素-3-（6”-丙二酰葡萄糖苷）、天竺葵素-3-（6"-丙二酰葡萄糖苷）、矮牵牛花素-3-葡萄糖苷、锦葵色素-3-木糖苷和飞燕草素。对AB-8树脂吸附和解吸花青素的条件进行优化:pH 3.5、上样量为0.51 mg/g（花青素质量/AB-8树脂质量）、洗脱溶液为80%甲醇溶液;花青素提取液经AB-8树脂柱层析初步纯化后,纯度由49.85%显着性提高至67.34%。制备型液相进一步纯化花青素制备高纯度花青素单体,获得纯度84.67%飞燕草素-3-葡萄糖苷和纯度93.76%矢车菊素-3-葡萄糖苷。（2）研究黑豆皮花青素矢车菊素-3-葡萄糖苷分别在三种常用细胞实验的培养液:HBSS溶液、含有10%胎牛血清（FBS）的RPMI 1640培养基和RPMI 1640培养基中的稳定性,并探究其与胎牛血清的相互作用机制及对其抗氧化活性的影响。结果表明矢车菊素-3-葡萄糖苷的在这三种溶液中的稳定性强弱为:HBSS>10%FBS+RPMI>RPMI,并且其降解产物均为原儿茶酸和间苯三酚醛,降解动力学模型依次为三级、零级和零级动力学模型。同时,矢车菊素-3-葡萄糖苷能使胎牛血清的内源荧光发生猝灭,属于静态猝灭,主要作用力为疏水作用力。矢车菊素-3-葡萄糖苷对胎牛血清中酪氨酸和色氨酸微环境的影响不大,但会使其蛋白质二级结构变松散。而DPPH,ABTS和FRAP等抗氧化实验研究表明胎牛血清会显着性降低矢车菊素-3-葡萄糖苷的ABTS自由基清除能力,对其DPPH自由基清除能力和铁原子还原能力的影响不大。（3）采用倒置荧光显微镜和HPLC-QQQ-MS研究矢车菊素-3-葡萄糖苷在LO2细胞中的分布和吸收转运情况。结果表明,矢车菊素-3-葡萄糖苷以原型的形式进入LO2细胞内,主要分布于细胞膜内。LO2细胞摄取矢车菊素-3-葡萄糖苷具有浓度和时间依赖性,其在80 μM C3G孵育10 h时,对C3G的吸收最高。同时LO2细胞摄取矢车菊素-3-葡萄糖苷还具有温度和pH依赖性,LO2细胞在37℃条件时更利于细胞摄取C3G及其在pH 5.0时对C3G的摄取,均表明其摄取方式存在主动运输,而其在4℃时对C3G的摄取,说明其摄取过程存在被动扩散的形式。以上结果表明LO2细胞在37℃和pH 7.4的条件下对C3G的摄取涉及主动运输和被动扩散两个过程。WB实验表明LO2细胞中存在P-gp、MRP2、GLUT2和OCT1转运蛋白,但P-gp和MRP2转运蛋白不参与矢车菊素-3-葡萄糖苷在LO2细胞转运过程中的外排过程,GLUT2和OCT1转运蛋白对矢车菊素-3-葡萄糖苷在LO2细胞中的转运也不起作用。
张元[2]（2018）在《黑糯米酒中花色苷稳定性研究》文中提出花色苷是黑糯米酒中的重要生物活性成分,赋予了黑糯米酒独特的色泽和功能。然而黑糯米酒花色苷不稳定,因此很有必要就其稳定性进行探究。通过对黑糯米酒总花色苷检测方法的选择、稳定性和光热降解动力学研究,以及黑糯米酒酿造过程中花色苷动态变化研究,为黑糯米酒的实际生产和贮藏等应用提供指导,减少花色苷的损失和降解,为高品质黑糯米酒进一步研究和开发提供科学的理论依据。实验结果如下:1.对黑糯米酒花色苷测定方法进行了研究。结果表明,三种方法测定黑糯米酒花色苷的平衡温度是30℃,平衡时间是40 min,测定波长为511 nm。单一pH法和差减法的最适pH为0.8,pH示差法最适pH是0.8和4.5。三种方法可直接测定黑糯米酒总花色苷含量,且精密度良好,其中pH示差法精密度最高。黑糯米酒酒精含量基本不影响三种方法测定结果的准确性,高浓度的葡萄糖对黑糯米酒花色苷有不同程度的护色效果。2.采用pH示差法研究了黑糯米酒酿造过程中花色苷的动态变化规律。结果表明,摊饭法比淋饭法更能降低花色苷损失,酒曲添加量对黑糯米酒中花色苷浓度无明显影响。在黑糯米酒酿造及陈酿过程中,花色苷浓度整体呈现下降趋势;糖化阶段花色苷浓度随时间降低较为明显;加酒发酵期间,花色苷浓度变化不明显;前发酵初期到发酵结束花色苷降低含量减少约为40%60%;陈酿期间,花色苷浓度平稳缓慢降低。3.以黑糯米酒花色苷含量为指标,研究了黑糯米酒花色苷在贮藏期间的稳定性。结果表明,黑糯米酒花色苷对低浓度K+、Fe2+和Ca2+具有较好的稳定性,尤其对各种浓度K+表现出了极好的稳定性;对高浓度Fe2+极不稳定;对Cu2+较为敏感。黑糯米酒花色苷低pH介质中较为稳定;黑糯米酒中花色苷耐氧化性较差,H2O2会使其褪色和降解;乙醇基本不影响黑糯米酒花色苷的稳定性;高浓度的葡萄糖有利于黑糯米酒花色苷的保存。4.深入探讨了黑糯米酒花色苷在不同光照和温度条件下的降解规律,并得到相应降解动力学方程。结果表明,黑糯米酒花色苷光稳定性和热稳定性都很差,高温和强光可严重降低其稳定性,光热降解符合一级动力学规律。黑糯米酒花色苷降解速率常数k由大到小排序:k室外日光>k室内灯光>k室内自然光>k室内遮光;k100℃>k90℃>k80℃>k70℃>k60℃。黑糯米酒花色苷热降解速率对温度反应在80℃90℃区域最为敏感,温度系数Q10为3.3482,热降解所需活化能Ea为90.14 kJ/mol。
张晓圆[3]（2017）在《黑豆红花色苷提取纯化、结构鉴定及稳定性研究》文中认为本文以黑豆皮为原材料,采用乙醇浸提法对黑豆红花色苷进行提取,研究了黑豆红花色苷的提取工艺、分离纯化方法,分析了提取物的理化性质及其结构的研究,并探索花色苷在不同条件下的稳定性,为黑豆红花色苷的在医药、化妆品等各个领域的开发利用提供科学依据。采用正交试验得到乙醇浸提黑豆红花色苷的最佳工艺:乙醇浓度为75 %,pH为1.0,料液比为1:40,提取温度50℃,提取时间1.5 h,提取次数为一次,花色苷的含量为 7.20 mg/g。黑豆红花色苷粗提物首先经过石油醚萃取,再通过AB-8大孔吸附树脂进行纯化,AB-8打孔吸附树脂对花色苷的吸附率达到76.27%,解析率为42.38%,黑豆红花色苷上样液吸光度在1.50左右,上样流速为2 mL/min, pH值为3.0。洗脱液乙醇浓度为60%,流速为1mL/min。纯化后花色苷得率为9.12%,回收率为84.13%。经过大孔树脂纯化后的黑豆红花色苷纯度更高,色价达到37.44。经过液质分析,该物质为车菊素-3-葡萄糖苷或者矢车菊素-3-半乳糖苷。在对黑豆红花色苷的稳定性研究结果发现,在pH1～3时,有较好的稳定性,对光和热稳定性较差。黑豆红花色苷与抗坏血酸、氧化剂H2O2和还原剂Na2S03接触,性质稳定性较差。糖类如蔗糖、葡萄糖和食品防腐剂对黑豆红花色苷的稳定性作用较小。Cu2+、Fe2+、Al3+、Fe3+这四种金属离子对黑豆红花色苷溶液的稳定性有特别明显的破坏作用,Na+、Mg2+对黑豆红花色苷稳定性的作用不明显,而Zn2+、Ca2+的存在则能增强黑豆红花色苷溶液的稳定性。此外,在高温高压和紫外线的存在对花色苷稳定性有明显的破坏作用。有机酸对黑豆红花色苷稳定性影响结果表明,在黑豆红花色苷溶液中加入草酸、顺丁烯二酸、丙二酸和酒石酸后,花色苷的最大吸光度有明显的增加,最大吸收波长发生红移,且其半衰期和活化能都显着提高,对光和热条件下稳定性更强。经过辅色后花色苷的成分与辅色前相比,没有发生变化,可知有机酸与花色苷之间的辅色作用为分子间辅色。为了提高花色苷的稳定性,通过辅色、醚化、酰化和酯化修饰黑豆红花色苷,并研究修饰后花色苷对光、热的稳定性和对DPPH清除能力。结果表明,在90 ℃经过5 h后,经过辅色、酰化和醚化修饰后花色苷保存率比未修饰组分别提高了 17.88%、16.75%、5.46%。在太阳光下照射8 d后经过辅色、酰化、酯化、醚化修饰后的花色苷保存率分别比未修饰组高25.27%、20.86%、20.19%、13.83%,且对DPPH的清除率和Vc相当,都在95%以上。
张志国,姜闪[4]（2017）在《食用玫瑰花褪色原因及控制措施研究进展》文中研究指明食用玫瑰花是蔷薇科蔷薇属植物的花,其花色鲜艳,常见花色有红色和粉色,是一种集食用价值与观赏价值于一体的花卉。但在食用玫瑰花贮存过程中,其色泽会发生变化,这种变化与食用玫瑰花中所含花色苷类物质的稳定性有关。本文通过综述花色苷的结构、pH值、温度、酶类、水分含量等多种因素对花色苷稳定性的影响,分析食用玫瑰花褪色的原因,并提出一些有效的控制措施,以延缓玫瑰花褪色速率。
陆卿卿[5]（2013）在《蓝莓汁中花色苷稳定性及抗氧化活性的研究》文中指出蓝莓含有丰富的花色苷类化合物,营养成分极其丰富,人们把它誉为“世界水果之王”。花色苷作为一种植物天然色素,是一种类黄酮类物质。花色苷是苯并吡喃结构,由六种花色素和多种单糖或二糖组成多种结构形式。花色苷具有的清除自由基、抗氧化、抗癌等多种功能,使之常作为一种功能性保健物质。在实际生产过程中,因其不稳定性,使之运用受到了限制。1.蓝莓在加工前热烫处理2min,蓝莓中的多酚氧化酶被钝化,出汁率为64.6%,花色苷含量为876.19mgL,总酚含量为275.09mg100g。蓝莓汁蓝度增加,红度下降。微波功率增加,蓝莓汁的色泽加深,红度增加,低于未经处理的蓝莓汁（839.62mg/L）。添加0.05%Vc的蓝莓汁,花色苷发生降解,含量为703.43mgL。蓝莓汁的亮度略有增加,红度略有下降,总酚含量191.32mg100g。热烫处理2min,效果最显着。2.花色苷颜色和可见光区的最大吸收波长受pH影响很大,pH1.0时,着色强度最大,pH>6.0,颜色向蓝色发展,颜色变化可逆。在光照条件下,时间的延长花色苷的吸光度下降很大,最终在可见区吸收峰消失,溶液迅速褪色。而避光条件下,花色苷溶液褪色缓慢。3.花色苷稳定性受温度的影响,45℃、60℃、75℃、90℃下加热4h,蓝莓汁花色苷的残留率分别为95.3%、80.4%、70.9%、40.5%。蓝莓汁中的花色苷在60℃以下热稳定性较好,对高温（>60℃）稳定性较差,褪色明显。蓝莓汁中花色苷的K随温度和pH值的升高而增大；t1/2则随温度升高而减小；活化能是88.7Kj/mol.4. Cu2+、Fe3+、Mg2+对蓝莓花色苷均有不良影响；Na+对花色苷的稳定性无明显影响；Zn2+、K+、Ca2+、Fe2+、Al3+对蓝莓汁中花色苷的稳定性表现出增强,A13+作用最显着。苹果酸、丙二酸、单宁酸、草酸均能够使蓝莓汁中花色苷的稳定性加强,苹果酸作用最显着。D-果糖对稳定性的增强作用要明显好于蔗糖、麦芽糖和葡萄糖。通过辅色剂添加量优化试验,确定辅色剂的最佳条件是A13+的浓度为0.07mol/L,苹果酸浓度为0.03mol/L,D-果糖的浓度为0.1mol/L。A520为1.77。5.蓝莓汁中花色苷具有清除羟自由基的能力。蓝莓汁中花色苷的ICs0为120.12μg/ml。当蓝莓汁中的花色苷浓度高于150μg时,清除率高于抗坏血酸；蓝莓汁中花色苷具有较强的还原能力,抗坏血酸的还原力约是蓝莓汁中花色苷还原力的2.08倍；蓝莓汁中花色苷对DPPH自由基的ICs0为43.81μg/ml,蓝莓汁中花色苷对DPPH自由基的清除率与抗坏血酸相近；蓝莓汁中花色苷的清除超氧阴离子的效果好于抗坏血酸,蓝莓汁中花色苷的IC50为87.65μg/ml.6.现工艺蓝莓汁的羟自由基清除率是原工艺蓝莓汁的2.70倍；现工艺的蓝莓汁的还原力是原工艺蓝莓汁的1.8倍；受热4h,原工艺蓝莓汁的超氧阴离子的清除率为70.03%,现工艺蓝莓汁的超氧阴离子的清除率为85.48%。
邵承斌,熊建功,陈盛明,李宁[6]（2012）在《有机酸对紫玉米芯色素的辅色作用》文中指出通过检测在紫玉米芯色素溶液中添加甘氨酸等几种有机酸后色素变化的动力学参数及其稳定性,探讨甘氨酸对紫玉米芯色素的辅色机理。结果表明:在pH5左右时甘氨酸辅色作用最明显,经过均匀实验条件优化,在色素质量浓度为0.96μg/mL、甘氨酸浓度为160mmol/L、Fe2+浓度为256mmol/L、温度75℃、pH值为5的条件下,10d后体系色素保存率为对照的1.49倍。甘氨酸对紫玉米芯色素的辅色机理主要是甘氨酸与花色苷发生了分子间相互作用,色素与甘氨酸以酯键结合后,活化能增加,从而提高了色素的稳定性。
徐妍,于泽源,李兴国[7]（2012）在《花青素在小浆果加工过程中的稳定性》文中进行了进一步梳理在总结pH、光照、温度、金属离子及自身化学结构等对花青素理化性质影响的基础上,对小浆果加工中影响花青素稳定性的各项工艺环节进行了系统探讨,以期为提高小浆果加工制品中花青素的稳定性,并维持其营养价值提供技术参考。
邓洁红,谭兴和,王锋,黄菲,张涛[8]（2010）在《刺葡萄皮花色苷的光热降解特性研究》文中指出为了解刺葡萄皮花色苷在光照及加热条件下的稳定性,明确其贮藏和应用条件,对刺葡萄皮花色苷的光热降解特性进行研究。结果表明:常温条件下,pH1～3色素液花色苷稳定性较好;避光及室内自然光照条件下放置20d内刺葡萄皮花色苷的稳定性无显着差异,但强光条件下,刺葡萄皮花色苷稳定性明显下降;刺葡萄皮花色苷热降解符合动力学一级反应规律,pH为1.0、3.0、4.5时,其热降解活化能Ea分别为99.3856,83.3645,73.7419kJ/mol,说明低pH条件下,刺葡萄皮花色苷的热稳定性较好,但pH1.0色素液在≥80℃加热时的花色苷半衰期t1/2≤4.10h,而pH3.0、4.5色素液在同样加热条件下的t1/2≤14.12h、13.20h;高温处理（≥80℃）时,pH3.0的色素液稳定性优于其余pH条件。
侯召华[9]（2010）在《黑米花色苷的制备及其对大鼠慢性酒精肝损伤保护作用的研究》文中研究指明黑米是优异的稻种资源,富含天然花色苷类化合物。花色苷是一类天然色素,属于黄酮类物质,具有抗氧化、无毒、无突变等特点。酒精滥用是全球范围内重要公共卫生问题,过量饮酒会在机体代谢过程中产大量的自由基与活性氧,导致肝脏及多器官损伤。本文研究了黑米中花色苷主要成分的提取工艺及对酒精性肝损伤的影响。1.鉴定黑米花色苷的主要成分及确定其检测方法。以矢车菊素-3-葡萄糖苷为标准品,建立了黑米花色苷的高效液相色谱（HPLC-DAD）法。通过液质联用（HPLC-ESI-MS）鉴定出四种花色苷,分别为矢车菊素-3-葡萄糖苷（cyanidin-3-glucoside, 91.0%）,矢车菊素-3,5-葡萄糖苷（cyanidin-3, 5-diglucoside, 0.92%）,矢车菊素-3-芸香糖苷（cyanidin-3-rutinoside, 0.94%）和芍药素-3-葡萄糖苷（peonidin-3-glucoside, 7.13%）。2.确定黑米花色苷最佳提取工艺,建立大孔吸附树脂纯化花色苷的方法。以矢车菊素-3-葡萄糖苷为跟踪指标,通过单因素和正交试验,对各因素进行研究,比较9种大孔吸附树脂对花色苷的静态吸附和解吸性能。黑米花色苷最佳提取条件,提取液乙醇/水/盐酸体积比为50/50/0.5,温度50℃,固液比为1:10 （g/mL）,提取时间为1小时,提取次数为3次。确定了AB-8为最佳吸附树脂,最佳条件为:洗脱剂为80%乙醇,上样流速为1.0BV/h,解吸流速为2.0BV/h。结论:测定经树脂纯化后提取物中花色苷的含量达到22.5 %（粗提物含量为3.74%）,树脂富集倍数为6.02。3.研究了黑米四种花色苷在温度（80°C, 90°C和100°C;4°C, 20°C和37°C）,pH1.0-6.0下的稳定性。结果表明四种花色苷降解遵循一级反应方程,随温度降解符合Arrhenius方程。四种花色苷的活化能（Ea）,半衰期（t1/2 ）和反应数率常数（k）不同且差异显着。花色苷的降解率均随温度和pH值得上升而增加,尤其是当温度达到100°C,pH值达到5.0时。贮藏温度和pH值对花色苷稳定性及色差有很大影响,花色苷溶液色差利用CIE L*a*b*参数对其进行评价。随温度增加在pH3.0时,L*, a*, b*值明显降低。4.探讨了黑米花色苷提取物（AEBR）对大鼠慢性酒精肝损伤的影响。结果表明:雄性Wistar大鼠摄入酒精后,血清中谷草酰胺转氨酶（AST）,丙氨酸转氨酶（ALT）和γ-谷氨酸转氨酶（GGT）以及肝组织中丙二醛（MDA）显着增加（P<0.05）。AEBR干预可显着缓解酒精伤害,尤其高剂量组（500mg/kg）,AEBR（500mg/kg）处理可显着降低血清中酶（AST, ALT和GGT）活性（P<0.01）,肝脏中MDA水平及甘油三酯（TG）,总胆固醇的浓度（TCH）。花色苷干预组表现出正常的抗氧化体系,谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）,超氧化物歧化酶（SOD）和谷胱甘肽-s-转移酶（GST）均在正常范围。以上结果均与组织学观察相一致。这表明AEBR能缓解酒精伤害,可明显减轻酒精对机体脂质代谢和抗氧化系统的不利影响。
谭红梅[10]（2010）在《气体射流冲击干燥无核紫葡萄品质分析》文中认为针对目前葡萄制干存在干燥时间长,产品品质较低,提出了气体射流冲击干燥技术用于无核紫葡萄干燥,能够有效缩短干燥时间,提高干燥效率和产品质量。实验研究了不同温度、风速和预处理下无核紫葡萄干的品质,对不同干燥方法的无核紫葡萄干进行理化测定和感官评价,对气体射流冲击干燥的无核紫葡萄中化学成分的降解进行动力学分析,为工艺参数的优化提供理论支持。对无核紫葡萄中花青素和白藜芦醇采用超声波提取,新鲜无核紫葡萄花青素提取的最佳条件为：酸度为0.3%的95%乙醇溶液于室温按固液比为1：9,超声功率为225W的条件下超声处理20min；无核紫葡萄干花青素提取的最佳条件为：酸度为1.5%的95%乙醇溶液于室温按固液比为1：12,超声功率为270W的条件下超声处理70min;新鲜无核紫葡萄白藜芦醇提取最佳条件为：乙醇浓度为75%、料液比1：4、提取时间40min、超声功率270W。无核紫葡萄干白藜芦醇提取最佳条件为：乙醇浓度为75%、料液比1：15、提取时间60min、超声功率315W。对无核紫葡萄干进行品质分析表明,气体射流冲击干燥无核紫葡萄总酸比其他干燥方式生产的无核紫葡萄干要高,还原糖随温度升高略有损失,花青素损失最为严重,白藜芦醇随温度升高有所增加,而单宁含量则随温度升高而有所下；实验选取的风速范围和不同清洗预处理方法对无核紫葡萄干品质影响不明显。自然干燥的无核紫葡萄干中花青素含量比其他干燥方式生产的无核紫葡萄干要高,自然干燥和太阳能干燥的无核紫葡萄干白藜芦醇和单宁含量比气体射流干燥干燥的要稍微低一些,几种干燥方式的无核紫葡萄干维生素C含量差异不明显。将几种干燥方式的无核紫葡萄干进行感官评价和物性参数测定,气体射流冲击干燥的无核紫葡萄表皮清洁,硬度和耐咀性值较高；经促干剂处理的无核紫葡萄干硬度和耐咀性相对较低,且没有葡萄干特征香味；自然干燥的无核紫葡萄表皮杂质明显。通过对气体射流冲击干燥的无核紫葡萄中维生素C、单宁、花青素、白藜芦醇进行降解动力学研究,随着温度的升高维生素C降解反应速率常数也增大,降解反应的活化能为23.0938KJ/mol。单宁随着干燥时间的延长逐渐损失,对无核紫葡萄中单宁进行动力学分析,其降解反应活化能为93.865KJ/mol。花青素降解符合动力学一级反应,其降解反应活化能为80.48KJ/mol。通过对白藜芦醇进行动力学分析,白藜芦醇降解反应活化能为46.944 KJ/mol。
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
| 摘要 |
| abstract |
| 第1章 绪论 |
| 1.1 黑豆皮花青素概述 |
| 1.2 花青素的分离纯化 |
| 1.2.1 柱层析法 |
| 1.2.2 固相萃取法 |
| 1.2.3 高速逆流色谱法 |
| 1.2.4 制备型高效液相色谱法 |
| 1.3 花青素的稳定性 |
| 1.3.1 温度对花青素的影响 |
| 1.3.2 氧和氧化剂对花青素的影响 |
| 1.3.3 pH的影响 |
| 1.3.4 生物大分子与花青素的相互作用 |
| 1.4 花青素的吸收转运 |
| 1.4.1 花青素在体内的分布和代谢 |
| 1.4.2 花青素在细胞内的吸收 |
| 1.4.3 转运蛋白 |
| 1.5 课题研究的价值、意义及主要内容 |
| 1.5.1 研究价值及意义 |
| 1.5.2 主要研究内容 |
| 第2章 黑豆皮中花青素的鉴定和制备 |
| 2.1 引言 |
| 2.2 材料及设备 |
| 2.2.1 原料 |
| 2.2.2 试剂 |
| 2.2.3 实验仪器 |
| 2.3 方法 |
| 2.3.1 黑豆皮花青素的提取 |
| 2.3.2 花青素紫外吸收光谱测定 |
| 2.3.3 花青素含量的测定 |
| 2.3.4 花青素成分的鉴定 |
| 2.3.5 黑豆皮花青素的纯化 |
| 2.3.6 数据处理与统计 |
| 2.4 结果 |
| 2.4.1 黑豆皮花青素的紫外吸收 |
| 2.4.2 黑豆皮花青素含量的测定 |
| 2.4.3 黑豆皮中花青素组成分析 |
| 2.4.4 AB-8大孔树脂纯化黑豆皮花青素的条件优化 |
| 2.4.5 制备型液相纯化黑豆皮花青素 |
| 2.5 讨论 |
| 2.5.1 黑豆皮花青素的定性及定量 |
| 2.5.2 黑豆皮花青素的制备 |
| 2.6 本章小结 |
| 第3章 矢车菊素-3-葡萄糖苷在细胞培养条件下的稳定性研究 |
| 3.1 引言 |
| 3.2 材料与设备 |
| 3.2.1 材料 |
| 3.2.2 仪器设备 |
| 3.3 方法 |
| 3.3.1 矢车菊素-3-葡萄糖苷在细胞培养条件下的稳定性和降解动力学研究 |
| 3.3.2 荧光光谱的测定 |
| 3.3.3 傅立叶变换红外光谱测定 |
| 3.3.4 圆二色谱测定 |
| 3.3.5 抗氧化性测定 |
| 3.3.6 数据处理与统计 |
| 3.4 结果与分析 |
| 3.4.1 矢车菊素-3-葡萄糖苷在细胞培养条件下的稳定性 |
| 3.4.2 矢车菊素-3-葡萄糖苷的降解动力学 |
| 3.4.3 矢车菊素-3-葡萄糖苷对胎牛血清的荧光淬灭作用及机理 |
| 3.4.4 矢车菊素-3-葡萄糖苷与胎牛血清结合反应的结合常数、结合位点和热点学常数 |
| 3.4.5 矢车菊素-3-葡萄糖苷对胎牛血清构象的影响 |
| 3.4.6 矢车菊素-3-葡萄糖苷对胎牛血清二级结构的影响 |
| 3.4.7 胎牛血清对矢车菊素-3-葡萄糖苷抗氧化活性的影响 |
| 3.5 讨论 |
| 3.5.1 矢车菊素-3-葡萄糖苷的稳定性 |
| 3.5.2 胎牛血清与矢车菊素-3-葡萄糖苷之间在细胞培养条件下的相互作用机制 |
| 3.5.3 矢车菊素-3-葡萄糖苷对胎牛血清蛋白质构象的影响 |
| 3.5.4 胎牛血清对矢车菊素-3-葡萄糖苷抗氧化性的影响 |
| 3.6 本章小结 |
| 第4章 矢车菊素-3-葡萄糖苷在细胞中的吸收转运 |
| 4.1 序言 |
| 4.2 材料与设备 |
| 4.2.1 材枓 |
| 4.2.2 仪器设备 |
| 4.3 方法 |
| 4.3.1 人源正常肝细胞(L02)的培养 |
| 4.3.2 CCK8法检测细胞活力 |
| 4.3.3 矢车菊素-3-葡萄糖苷在LO2细胞中的定位分布 |
| 4.3.4 矢车菊素-3-葡萄糖苷在LO2细胞中的吸收 |
| 4.3.5 HPLC-QQQ-MS定量分析条件 |
| 4.3.6 Western-Blotting检测LO2细胞中转运体蛋白的表达 |
| 4.3.7 数据处理与统计 |
| 4.4 结果 |
| 4.4.1 DMSO、C3G和各种抑制剂对LO2细胞活力的影响 |
| 4.4.2 C3G在LO2细胞内的定位分布 |
| 4.4.3 LO2细胞对C3G的吸收利用 |
| 4.4.4 转运蛋白在LO2细胞摄取C3G过程中的作用 |
| 4.5 讨论 |
| 4.5.1 LO2细胞对C3G的吸收利用 |
| 4.5.2 转运蛋白在LO2细胞摄取C3G过程中的作用 |
| 4.6 本章小结 |
| 第5章 结论与展望 |
| 5.1 结论 |
| 5.1.1 黑豆皮中花青素的鉴定和制备 |
| 5.1.2 矢车菊素-3-葡萄糖苷在细胞培养条件下的稳定性研究 |
| 5.1.3 矢车菊素-3-葡萄糖苷在细胞中的吸收转运 |
| 5.2 进一步工作的方向 |
| 致谢 |
| 参考文献 |
| 攻读学位期间的研究成果 |
| 摘要 |
| abstract |
| 第一章 前言 |
| 1.1 黑糯米和黑糯米酒概述 |
| 1.1.1 黑糯米简介 |
| 1.1.2 黑糯米酒简介 |
| 1.2 花色苷概述 |
| 1.2.1 花色苷简介 |
| 1.2.2 花色苷的结构和性质 |
| 1.2.3 花色苷的生理功能 |
| 1.2.4 花色苷定量分析方法 |
| 1.3 花色苷稳定性及降解动力学 |
| 1.3.1 花色苷稳定性 |
| 1.3.2 花色苷降解动力学 |
| 1.4 研究目的意义及内容 |
| 1.4.1 研究目的及意义 |
| 1.4.2 研究内容 |
| 第二章 黑糯米酒总花色苷测定方法的研究 |
| 2.1 引言 |
| 2.2 材料与仪器 |
| 2.2.1 实验原料 |
| 2.2.2 主要试剂与材料 |
| 2.2.3 主要仪器与设备 |
| 2.3 实验方法 |
| 2.3.1 黑糯米酒花色苷测定波长的选定 |
| 2.3.2 测定条件选定 |
| 2.3.3 矢车菊-3-O-葡萄糖苷标准曲线的绘制 |
| 2.3.4 pH示差法测定黑糯米酒总花色苷 |
| 2.3.5 单一pH法测定黑糯米酒总花色苷 |
| 2.3.6 差减法测定黑糯米酒总花色苷 |
| 2.3.7 总花色苷计算方法 |
| 2.3.8 黑糯米酒酒精含量对测定结果的影响 |
| 2.3.9 黑糯米酒糖浓度对测定结果的影响 |
| 2.3.10 不同浓度酒液对花色苷测定的影响 |
| 2.3.11 精密度和加标回收率试验 |
| 2.4 结果与分析 |
| 2.4.1 黑糯米酒花色苷的光谱特性 |
| 2.4.2 测定条件选定 |
| 2.4.3 矢车菊素-3-O-葡萄糖苷标准曲线的绘制 |
| 2.4.4 三种总花色苷测定方法的比较 |
| 2.4.5 酒液pH对测定结果的影响 |
| 2.4.6 黑糯米酒酒精含量对测定结果的影响 |
| 2.4.7 黑糯米酒糖浓度对测定结果影响 |
| 2.4.8 酒液浓度对测定结果的影响 |
| 2.4.9 三种方法精密度试验 |
| 2.4.10 pH示差法加标回收率试验 |
| 2.5 本章小结 |
| 第三章 黑糯米酒酿造过程中花色苷的动态变化 |
| 3.1 引言 |
| 3.2 材料与仪器 |
| 3.2.1 实验原料 |
| 3.2.2 主要试剂与材料 |
| 3.2.3 主要仪器与设备 |
| 3.3 实验方法 |
| 3.3.1 实验室酿造黑糯米酒工艺流程 |
| 3.3.2 黑糯米酒花色苷测定方法 |
| 3.3.3 黑糯米酒酿造工艺设计 |
| 3.4 结果与分析 |
| 3.4.1 米饭冷却方式对黑糯米酒花色苷含量的影响 |
| 3.4.2 酒曲添加量对黑糯米酒花色苷含量的影响 |
| 3.4.3 酒精添加量对黑糯米酒花色苷含量的影响 |
| 3.4.4 糖化阶段黑糯米酒花色苷含量变化 |
| 3.4.5 发酵阶段黑糯米酒花色苷含量变化 |
| 3.4.6 煎酒操作对黑糯米酒花色苷含量的影响 |
| 3.4.7 陈酿阶段黑糯米酒花色苷含量变化 |
| 3.5 本章小结 |
| 第四章 黑糯米酒花色苷稳定性研究 |
| 4.1 引言 |
| 4.2 材料与仪器 |
| 4.2.1 实验原料 |
| 4.2.2 主要试剂与材料 |
| 4.2.3 主要仪器与设备 |
| 4.3 实验方法 |
| 4.3.1 金属离子对黑糯米酒中花色苷稳定性影响 |
| 4.3.2 过氧化物对黑糯米酒花色苷稳定性的影响 |
| 4.3.3 pH对黑糯米酒花色苷稳定性的影响 |
| 4.3.4 酒精含量对黑糯米酒花色苷稳定性的影响 |
| 4.3.5 葡萄糖对黑糯米酒花色苷稳定性的影响 |
| 4.3.6 花色苷保存率计算 |
| 4.4 结果与分析 |
| 4.4.1 金属离子对黑糯米酒花色苷稳定性的影响 |
| 4.4.2 过氧化物对黑糯米酒花色苷稳定性的影响 |
| 4.4.3 pH对黑糯米酒花色苷稳定性的影响 |
| 4.4.4 酒精对黑糯米酒花色苷稳定性的影响 |
| 4.4.5 葡萄糖对黑糯米酒花色苷稳定性的影响 |
| 4.5 本章小结 |
| 第五章 黑糯米酒花色苷光热降解动力学研究 |
| 5.1 引言 |
| 5.2 材料与仪器 |
| 5.2.1 实验原料 |
| 5.2.2 主要试剂与材料 |
| 5.2.3 主要仪器与设备 |
| 5.3 实验方法 |
| 5.3.1 光照对黑糯米酒花色苷降解的影响 |
| 5.3.2 温度对黑糯米酒花色苷降解的影响 |
| 5.3.3 黑糯米酒花色苷光热降解动力学模型构建 |
| 5.4 结果与分析 |
| 5.4.1 光照对黑糯米酒花色苷降解的影响 |
| 5.4.2 黑糯米酒花色苷光降解动力学参数 |
| 5.4.3 温度对黑糯米酒花色苷降解的影响 |
| 5.4.4 黑糯米酒花色苷热降解动力学参数 |
| 5.5 本章小结 |
| 第六章 结论与展望 |
| 6.1 结论 |
| 6.2 展望 |
| 致谢 |
| 参考文献 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 |
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 1 前言 |
| 1.1 花色苷的研究概况 |
| 1.1.1 花色苷的结构 |
| 1.1.2 花色苷的生理功能 |
| 1.1.3 花色苷的提取方法 |
| 1.1.4 花色苷的分离纯化 |
| 1.1.5 花色苷的分析和结构鉴定 |
| 1.1.6 花色苷的稳定性 |
| 1.2 花色苷的开发应用及前景展望 |
| 1.2.1 存在的问题 |
| 1.3 黑豆红花色苷的研究概况 |
| 1.4 研究目的与意义 |
| 1.5 主要研究内容 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 实验材料 |
| 2.2 主要仪器 |
| 2.3 主要试剂 |
| 2.4 黑豆红花色苷的提取工艺研究 |
| 2.4.1 黑豆红花色苷最大吸收波长测定 |
| 2.4.2 花色苷含量的测定 |
| 2.4.3 单因素实验 |
| 2.4.4 乙醇提取黑豆红花色苷的正交实验 |
| 2.4.5 提取级数的确定 |
| 2.5 石油醚脱脂处理 |
| 2.6 大孔吸附树脂纯化黑豆红花色苷的研究 |
| 2.6.1 黑豆红花色苷粗提液的制备 |
| 2.6.2 大孔吸附树脂的选择 |
| 2.6.3 大孔吸附树脂对黑豆红花色苷的静态吸附与解吸实验 |
| 2.7 黑豆红花色苷成品的制备 |
| 2.7.1 真空冷冻干燥法制备花色苷成品 |
| 2.7.2 成品色价的测定 |
| 2.7.3 纯化前后黑豆红花色苷的比较 |
| 2.8 黑豆红花色苷结构的初步分析 |
| 2.8.1 特征颜色反应 |
| 2.8.2 紫外光谱法分析 |
| 2.8.3 红外光谱法分析 |
| 2.8.4 花色苷的HPLC/MS鉴定 |
| 2.9 黑豆红花色苷的理化稳定性 |
| 2.9.1 pH对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 2.9.2 温度对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 2.9.3 光照对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 2.9.4 抗坏血酸对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 2.9.5 糖对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 2.9.6 食品防腐剂对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 2.9.7 氧化剂和还原剂对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 2.9.8 金属离子对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 2.9.9 高温高压对对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 2.9.10 紫外线对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 2.10 有机酸对黑豆红花色苷的辅色作用研究 |
| 2.10.1 有机酸种类对黑豆红花色苷辅色效果的影响 |
| 2.10.2 有机酸对黑豆红花色苷最大吸收波长的影响 |
| 2.10.3 有机酸浓度对黑豆红花色苷辅色效果 |
| 2.10.4 有机酸辅色对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 2.10.5 有机酸辅色前后组分的变化 |
| 2.11 黑豆红花色苷的分子修饰 |
| 2.11.1 黑豆红花色苷的分子修饰 |
| 2.11.2 分子修饰后黑豆红花色苷的稳定性研究 |
| 2.11.3 结构观察 |
| 2.11.4 红外光谱测定 |
| 2.11.5 抗氧化活性实验 |
| 3 结果与讨论 |
| 3.1 黑豆红花色苷提取条件实验 |
| 3.1.1 黑豆红花色苷最大吸收波长的测定 |
| 3.1.2 黑豆红花色苷提取单因素实验 |
| 3.1.3 乙醇提取黑豆红花色苷正交实验结果分析 |
| 3.1.4 浸提级数的确定 |
| 3.2 大孔吸附树脂对黑豆红花色苷纯化精制实验 |
| 3.2.1 不同型号的大孔吸附树脂对花色苷静态吸附及解吸效果 |
| 3.3 黑豆红花色苷成品的制备 |
| 3.3.1 纯化前后黑豆红花色苷色价的比较结果 |
| 3.3.2 纯化前后黑豆红花色苷得率和回收率结果 |
| 3.3.3 高效液相色谱法比较纯化前后的黑豆红花色苷 |
| 3.4 黑豆红花色苷结构的初步分析 |
| 3.4.1 特征颜色反应 |
| 3.4.2 紫外光谱法分析 |
| 3.4.3 红外光谱法分析 |
| 3.4.4 花色苷的HPLC/MC鉴定 |
| 3.5 黑豆红花色苷的理化稳定性 |
| 3.5.1 pH对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 3.5.2 温度对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 3.5.3 光照对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 3.5.4 抗坏血酸对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 3.5.5 糖对黑豆红花色苷稳定性影响 |
| 3.5.6 食品防腐剂对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 3.5.7 氧化剂和还原剂对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 3.5.8 金属离子对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 3.5.9 高温高压对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 3.5.10 紫外线黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 3.6 有机酸对黑豆红花色苷的辅色作用研究 |
| 3.6.1 有机酸种类对黑豆红花色苷辅色效果的影响 |
| 3.6.2 有机酸对黑豆红花色苷最大吸收波长的影响 |
| 3.6.3 有机酸浓度对黑豆红花色苷辅色效果 |
| 3.6.4 有机酸辅色对黑豆红花色苷稳定性的影响 |
| 3.6.5 有机酸对黑豆红花色苷热降解动力学的影响 |
| 3.6.6 黑豆红花色苷辅色前后组分的变化 |
| 3.7 黑豆红花色苷的分子修饰 |
| 3.7.1 分子修饰前后紫外可见光光谱特性 |
| 3.7.2 分子修饰前后花色苷稳定性 |
| 3.7.3 结构观察 |
| 3.7.4 分子修饰前后红外光光谱特性 |
| 3.7.5 黑豆红花色苷对DPPH自由基的清除活性 |
| 4 结论 |
| 5 展望 |
| 6 参考文献 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 |
| 8 致谢 |
| 1 食用玫瑰花所含花色苷的结构及其稳定性 |
| 1.1 食用玫瑰花中花色苷的结构类型 |
| 1.2 影响食用玫瑰花中花色苷稳定性的因素 |
| 1.2.1 结构对食用玫瑰花中花色苷稳定性的影响 |
| 1.2.2 p H值对食用玫瑰花中花色苷稳定性的影响 |
| 1.2.3 温度对食用玫瑰花中花色苷稳定性的影响 |
| 1.2.4 光照对食用玫瑰花中花色苷稳定性的影响 |
| 1.2.5 酶对食用玫瑰花中花色苷稳定性的影响 |
| 1.2.6 水分含量对食用玫瑰花中花色苷稳定性的影响 |
| 1.2.7 氧气及抗坏血酸对食用玫瑰花中花色苷稳定性的影响 |
| 1.2.8 糖及降解产物对食用玫瑰花中花色苷稳定性的影响 |
| 1.2.9 金属离子对食用玫瑰花中花色苷稳定性的影响 |
| 2 防止食用玫瑰花褪色的控制措施 |
| 2.1 利用辅色作用提高花色苷的稳定性 |
| 2.2 选择合适的p H值溶液处理食用玫瑰花 |
| 2.3 采用低温贮存提高花色苷的稳定性 |
| 2.4 采用避光保藏食用玫瑰花 |
| 2.5 利用干燥技术对食用玫瑰花进行保色处理 |
| 2.6 采用控氧技术提高花色苷的稳定性 |
| 2.7 添加食品添加剂 |
| 3 结语 |
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 文献综述 |
| 1 蓝莓简介 |
| 1.1 蓝莓的分布和种类 |
| 1.2 蓝莓的营养价值和生理功能 |
| 1.3 蓝莓产品的开发现状 |
| 2 植物花色苷的研究现状 |
| 2.1 花色苷的结构 |
| 2.2 花色苷的生理功能 |
| 2.3 花色苷的稳定性 |
| 2.4 花色苷研究的发展趋势 |
| 3 蓝莓多酚的研究进展 |
| 4 立题的目的和意义 |
| 5 研究内容 |
| 参考文献 |
| 第二章 蓝莓汁加工过程中的防酶促褐变工艺 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 实验材料 |
| 1.2 实验仪器 |
| 1.3 试验方法 |
| 2 实验结果 |
| 2.1 pH值对蓝莓PPO活性的影响 |
| 2.2 温度对蓝莓PPO活性的影响 |
| 2.3 热烫处理对蓝莓汁的影响 |
| 2.4 微波处理和添加0.05%Vc对蓝莓汁的影响 |
| 3 讨论 |
| 4 结论 |
| 参考文献 |
| 第三章 蓝莓汁中花色苷的稳定性 |
| 1 材料和方法 |
| 1.1 材料与试剂 |
| 1.2 仪器 |
| 1.3 试验方法 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 pH值对蓝莓汁花色苷稳定性的影响 |
| 2.2 温度对蓝莓汁中花色苷稳定性影响 |
| 2.3 蓝莓汁中花色苷热降解动力学分析 |
| 2.4 光照对蓝莓汁中花色苷稳定性的影响 |
| 2.5 金属离子对蓝莓汁中花色苷稳定性的影响 |
| 2.6 有机酸对蓝莓汁中花色苷稳定性的影响 |
| 2.7 氧化剂、还原剂、护色剂对蓝莓汁中花色苷稳定性的影响 |
| 2.8 糖对蓝莓汁中花色苷稳定性的影响 |
| 2.9 辅色剂优化实验 |
| 3 讨论 |
| 4 结论 |
| 参考文献 |
| 第四章 蓝莓汁抗氧化活性研究 |
| 1 试剂和方法 |
| 1.1 实验试剂 |
| 1.2 主要仪器 |
| 1.3 试验方法 |
| 2 实验结果 |
| 2.1 蓝莓汁中花色苷的抗氧化活性 |
| 2.2 原工艺和现工艺蓝莓汁的抗氧化活性 |
| 3 讨论 |
| 4 结论 |
| 参考文献 |
| 全文总结 |
| 致谢 |
| 硕士期间发表论文情况 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料、试剂与仪器 |
| 1.2 紫玉米芯色素的制备 |
| 1.3 有机酸对紫玉米芯色素稳定性影响 |
| 1.4 温度对紫玉米芯色素稳定性影响 |
| 1.5 均匀实验 |
| 1.6 紫外光谱测定 |
| 1.7 红外光谱测定 |
| 1.8 保存率 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 有机酸对紫玉米芯色素稳定性的影响 |
| 2.2 温度对紫色玉米芯色素稳定性的影响 |
| 2.3 均匀试验 |
| 2.4 紫外光谱 |
| 2.5 红外光谱 |
| 3 结论 |
| 1 花青素稳定性的影响因子 |
| 1.1 pH |
| 1.2 光照 |
| 1.3 温度 |
| 1.4 金属离子 |
| 1.5 自身化学结构 |
| 1.6 其他组分因素 |
| 2 影响小浆果花青素稳定性的加工技术环节 |
| 2.1 果汁加工 |
| 2.1.1 破碎 |
| 2.1.2 压榨或浸提 |
| 2.1.3 酶解 |
| 2.1.4 加胶 |
| 2.1.5 脱气 |
| 2.1.6 糖酸调节 |
| 2.1.7 浓缩 |
| 2.1.8 灭菌 |
| 2.2 果酒的酿造 |
| 2.2.1 发酵温度 |
| 2.2.2 氧气 |
| 2.2.3 酵母菌 |
| 2.2.4 其他物质 |
| 3 展望 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.1.1 原料 |
| 1.1.2 主要仪器 |
| 1.1.3 主要试剂 |
| 1.2 试验方法 |
| 1.2.1 刺葡萄皮色素提取 |
| 1.2.2 pH值对刺葡萄皮色素稳定性的影响试验 |
| 1.2.3 光照对刺葡萄皮色素稳定性的影响试验 |
| 1.2.4 热对刺葡萄皮色素稳定性的影响试验 |
| 1.2.5 刺葡萄皮花色苷热降解动力学参数解析 |
| 1.2.6 数据分析方法 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 pH值对刺葡萄皮色素稳定性的影响 |
| 2.2 光照对刺葡萄皮色素稳定性的影响 |
| 2.3 热对刺葡萄皮色素稳定性的影响 |
| 2.3.1 热处理对刺葡萄皮花色苷残留值的影响 |
| 2.3.2 刺葡萄皮花色苷热降解动力学参数解析 |
| 2.3.3 刺葡萄皮花色苷热降解温度系数 |
| 3 讨论 |
| 3.1 pH值对刺葡萄皮色素的影响 |
| 3.2 光对刺葡萄皮色素的影响 |
| 3.3 热对刺葡萄皮色素的影响 |
| 4 结论 |
| 摘要 |
| Abstract |
| 第一章 引言 |
| 1.1 前言 |
| 1.2 花色苷研究进展 |
| 1.2.1 花色苷结构 |
| 1.2.2 花色苷稳定性 |
| 1.2.3 花色苷生物合成的基本途径 |
| 1.2.4 花色苷的提取 |
| 1.2.5 花色苷的纯化 |
| 1.2.6 花色苷的分析方法 |
| 1.3 花色苷的保健功能 |
| 1.3.1 花色苷的抗氧化及清除自由基功能 |
| 1.3.2 降低血清胆固醇减少动脉粥样硬化 |
| 1.3.3 减轻肝脏机能障碍 |
| 1.3.4 抗变异及抗肿瘤作用 |
| 1.3.5 其它生理功能 |
| 1.4 酒精性肝损伤 |
| 1.4.1 酒精性肝损伤的流行病学 |
| 1.4.2 酒精性肝损伤的发病机制 |
| 1.4.3 预防及治疗 |
| 1.5 立题意义 |
| 第二章 黑米花色苷检测方法的确立及成分鉴定 |
| 2.1 前言 |
| 2.2 材料与方法 |
| 2.2.1 实验材料 |
| 2.2.2 实验仪器及试剂 |
| 2.2.3 实验方法 |
| 2.3 结果与分析 |
| 2.3.1 黑米花色苷检测方法的确定 |
| 2.3.2 黑米花色苷成分的确定 |
| 2.4 讨论 |
| 第三章 黑米花色苷的提取及纯化 |
| 3.1 前言 |
| 3.2 材料与方法 |
| 3.2.1 实验材料 |
| 3.2.2 实验试剂 |
| 3.2.3 实验方法 |
| 3.3 结果与分析 |
| 3.3.1 黑米花色苷浸提条件 |
| 3.3.2 大孔吸附树脂柱层析对黑米花色苷的纯化 |
| 3.4 讨论 |
| 第四章 黑米花色苷降解动力学及稳定性研究 |
| 4.1 前言 |
| 4.2 材料与方法 |
| 4.2.1 实验材料 |
| 4.2.2 主要仪器及试剂 |
| 4.2.3 实验方法 |
| 4.3 结果与分析 |
| 4.3.1 黑米花色苷热降解动力学 |
| 4.3.2 贮藏过程中黑米花色苷降解动力学 |
| 4.4 讨论 |
| 第五章 黑米花色苷提取物对慢性酒精性肝损伤保护作用 |
| 5.1 前言 |
| 5.2 材料和方法 |
| 5.2.1 实验材料 |
| 5.2.2 实验仪器 |
| 5.2.3 实验方法 |
| 5.3 结果与分析 |
| 5.3.1 黑米花色苷提取物的成分分析 |
| 5.3.2 黑米花色苷提取物对大鼠体重、大鼠肝脏重量及其相关指数的影响 |
| 5.3.3 黑米花色苷提取物对大鼠肝损伤AST , ALT 和 GGT 活性的影响 |
| 5.3.4 黑米花色苷提取物对大鼠血脂水平的影响 |
| 5.3.5 黑米花色苷提取物对GSH 和MDA 浓度的影响 |
| 5.3.6 黑米花色苷提取物对血清中GST、SOD 和GSH-Px 的影响 |
| 5.3.7 黑米花色苷提取物对肝组织中GST、SOD 和GSH-Px 的影响 |
| 5.3.8 病理学观察 |
| 5.4 讨论 |
| 第六章 结论 |
| 6.1 黑米花色苷的检测 |
| 6.2 黑米花色苷成分的鉴定 |
| 6.3 黑米花色苷的提取及纯化 |
| 6.4 黑米花色苷稳定性 |
| 6.5 黑米花色苷提取物对酒精性肝损伤的保护作用 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 作者简历 |
| 摘要 |
| Abstract |
| 第一章 绪论 |
| 1.1 课题的提出和意义 |
| 1.1.1 国外葡萄及葡萄干的生产概况 |
| 1.1.2 我国葡萄及葡萄干的生产概况 |
| 1.1.3 葡萄干生产存在的问题 |
| 1.2 果蔬干燥品质研究现状 |
| 1.2.1 果蔬制干品质研究现状 |
| 1.2.2 国内外葡萄干品质研究现状 |
| 1.2.3 气体射流技术研究现状 |
| 1.3 课题的立题意义和技术路线 |
| 1.3.1 立题背景和意义 |
| 1.3.2 研究内容 |
| 1.3.3 技术路线 |
| 第二章 无核紫葡萄中花青素及白藜芦醇含量的测定 |
| 2.1 实验材料、试剂及设备 |
| 2.2 实验方法 |
| 2.2.1 高效液相色谱法测定白藜芦醇含量 |
| 2.2.2 新鲜无核紫葡萄中花青素含量的测定 |
| 2.2.3 无核紫葡萄干中花青素含量的测定 |
| 2.2.4 新鲜无核紫葡萄中白藜芦醇含量的测定 |
| 2.2.5 无核紫葡萄干中白藜芦醇含量的测定 |
| 2.3 结果与分析 |
| 2.3.1 高效液相色谱法测定白藜芦醇含量 |
| 2.3.2 新鲜无核紫葡萄中花青素含量的测定 |
| 2.3.3 无核紫葡萄干中花青素含量的测定 |
| 2.3.4 新鲜无核紫葡萄白藜芦醇含量的测定 |
| 2.3.5 无核紫葡萄干白藜芦醇含量的测定 |
| 2.4 小结 |
| 第三章 不同气体射流冲击干燥条件下无核紫葡萄品质分析 |
| 3.1 试验材料与设备 |
| 3.2 试验方法 |
| 3.2.1 主要理化指标测定 |
| 3.2.2 不同气体射流冲击干燥条件下无核紫葡萄干品质分析 |
| 3.2.3 几种干燥方法对无核紫葡萄干品质分析 |
| 3.3 试验结果与分析 |
| 3.3.1 不同气体射流冲击干燥条件下无核紫葡萄干品质分析 |
| 3.3.2 几种干燥方法对无核紫葡萄干品质分析 |
| 3.4 小结 |
| 第四章 气体射流冲击干燥过程动力学分析 |
| 4.1 实验材料与设备 |
| 4.2 实验方法 |
| 4.2.1 气体射流冲击干燥过程中维生素C的动力学分析 |
| 4.2.2 气体射流冲击干燥过程中单宁的动力学分析 |
| 4.2.3 气体射流冲击干燥过程中花青素的动力学分析 |
| 4.2.4 气体射流冲击干燥过程中白藜芦醇的动力学分析 |
| 4.3 实验结果与分析 |
| 4.3.1 气体射流冲击干燥过程中维生素C的动力学分析 |
| 4.3.2 气体射流冲击干燥过程中单宁的动力学分析 |
| 4.3.3 气体射流冲击干燥过程中花青素的动力学分析 |
| 4.3.4 气体射流冲击干燥过程中白藜芦醇的动力学分析 |
| 4.4 小结 |
| 第五章 不同干燥方式的无核紫葡萄干物性学分析 |
| 5.1 材料与设备 |
| 5.2 试验方法 |
| 5.2.1 无核紫葡萄干感官品质分析 |
| 5.2.2 无核紫葡萄干物性指标分析 |
| 5.3 结果与分析 |
| 5.3.1 无核紫葡萄干感官品质分析 |
| 5.3.2 无核紫葡萄干物性指标分析 |
| 5.4 小结 |
| 第六章 结论与展望 |
| 6.1 结论 |
| 6.1.1 无核紫葡萄中白藜芦醇和花青素的提取 |
| 6.1.2 气体射流冲击干燥试验品质分析 |
| 6.1.3 气体射流冲击干燥过程动力学研究 |
| 6.1.4 无核紫葡萄不同干燥方式物性学分析 |
| 6.2 创新点 |
| 6.3 展望 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 作者简历 |
| 导师评阅表 |
